Serumauswahl für Zytotoxizitätsassays – ADCC, CDC, MTT, AlamarBlue, LDH und ELISpot
Serum ist in Zytotoxizitätsassays kein neutraler Hintergrund. Es ist die biologisch aktivste Variable in Ihrem System – es enthält Komplementproteine, Immunglobuline, Wachstumsfaktoren und lipidbindende Proteine, die direkt mit Effektorzellen, Zielzellen, fluoreszierenden Auslesereagenzien und Testverbindungen interagieren. Die Verwendung einer falschen Qualität führt nicht zu einer erhöhten Variabilität. Sie verändert vielmehr das gemessene Signal.
2. Aktives Komplement in Nicht-HI-Serum führt zur spontanen Lyse komplementempfindlicher Zelllinien – verstärkt die Hintergrundzytotoxizität.
3. FBS und BSA binden fluoreszierende Farbstoffe (AlamarBlue, Calcein AM) — Die Serumkonzentration muss in ALLEN Vertiefungen, einschließlich der Kontrollen, identisch sein.
Kurzübersicht – Serum nach Testart
| Assay-Typ | Empfohlenes Serum | Standard FBS? | Kritische Störung |
|---|---|---|---|
| ADCC (durch NK-Zellen vermittelt) | FBS Extrem niedriger IgG-Wert <5 µg/ml | ✗ Nein | Rinder-IgG konkurriert mit monoklonalen Antikörpern um den FcγRIII auf NK-Zellen |
| CDC – aktives Komplement | Human-Serum-AB OTC (nativ) | ✗ Nein | Spezifität des Rinderkomplements ≠ Spezifität des menschlichen Komplements |
| CDC – Negativkontrolle | Humanes Serum AB, hitzeinaktiviert | ✗ Nein | HI zerstört das Komplement – muss in Kombination mit „native“ verwendet werden, damit CDC gültig ist |
| MTT / MTS | FBS Geringer Endotoxingehalt ≤ 5 EU/ml | ⚠ Nur LE | Endotoxin aktiviert TLR4 → unspezifische Wachstumshemmung |
| AlamarBlue / Resazurin | FBS Geringer Endotoxingehalt ≤ 5 EU/ml | ⚠ Nur LE | FBS/BSA-Quench-Fluoreszenz – identisches Serum % in ALLEN Vertiefungen |
| LDH-Veröffentlichung | FBS Geringer Endotoxingehalt, geringer Hämoglobingehalt | ⚠ Nur niedriger Hb-Wert | Durch Hämolyse wird endogenes LDH freigesetzt → erhöhter Hintergrundwert |
| ELISpot (IFN-γ, Granzym B) | FBS Sehr geringer Endotoxingehalt ≤ 1 EU/ml oder Humanes Serum AB HI | ✗ Nein | Endotoxin aktiviert Monozyten → unspezifischer Spot-Hintergrund |
| Hepatotoxizität (HepG2, HepaRG) | FBS Geringer Endotoxingehalt ≤ 5 EU/ml | ⚠ Nur LE | Endotoxin aktiviert die angeborenen Immunreaktionen bei Leberkrebs |
| Zytotoxizität von 3D-Sphäroiden | FBS Extrem niedriger IgG-Wert <5 µg/ml (2–5%) | ✗ Nein | Rinder-IgG beeinträchtigt die Messung von Antitumor-Antikörpern an Sphäroiden |
| Neutralisationstest | FBS Sehr geringer Endotoxingehalt ≤ 1 EU/ml | ✗ Nein | Komplement in Nicht-HI-FBS kann umhüllte Viren neutralisieren |
ADCC – Warum FBS mit extrem niedrigem IgG-Gehalt unverzichtbar ist
ADCC misst die durch NK-Zellen vermittelte Abtötung von mit Antikörpern opsonisierten Zielzellen über FcγRIII (CD16). Der Standard FBS enthält 200–800 µg/ml Rinder-IgG, das direkt an FcγRIII bindet – wodurch es mit dem therapeutischen mAb konkurriert und die gemessene Zytotoxizität verringert. Kontrollen können dies nicht ausgleichen – die Interferenz tritt vor der Messung auf.
| Parameter | Empfehlung | Anmerkung |
|---|---|---|
| Serumqualität | FBS Extrem niedriger IgG-Wert <5 µg/ml | Verwendung in Medien zur Vermehrung von Effektorzellen UND in Assay-Medien – durchgehend einheitlich |
| Konzentration | 5–10% | In allen Vertiefungen identisch, einschließlich der Kontrollen |
| Effektorzellen | PBMC oder gereinigte NK-Zellen | Vor der Untersuchung mindestens 5 Tage lang in FBS Ultra Low IgG kultivieren |
| Waschen der Zielzellen | Vor dem Assay zweimal waschen | Rinder-IgG-Rückstände aus dem Medium der Zielzellen entfernen |
| Auslesung | LDH-Freisetzung, Calcein AM oder Durchfluss (PI) | Bei der Kontrolle der spontanen Freisetzung muss eine identische Serumkonzentration verwendet werden |
| Typisches E:T-Verhältnis | 10:1 bis 50:1 | Optimierung je nach Zelllinie und mAb-Konzentration |
CDC – Warum „Human Serum AB OTC“ erforderlich ist
Das CDC misst die antikörpervermittelte Aktivierung der Komplementkaskade, die zur Bildung von MAC und zur Lyse der Zielzellen führt. Das Komplement ist in hohem Maße artspezifisch – das Rinderkomplement weist im Vergleich zu menschlichen Zellen eine andere Spezifität, Aktivierungskinetik und andere Wechselwirkungen mit regulatorischen Proteinen auf. Human Serum AB OTC (nativ, nicht hitzeinaktiviert) liefert aktives menschliches Komplement.
| Anwendung | Serum | Warum |
|---|---|---|
| CDC-Assay – aktives Komplement | Human-Serum-AB OTC (nativ) — 10–25% | Aktives menschliches Komplementsystem. Typ AB – keine Anti-A/B-Lyse der Zielzellen. |
| CDC-Assay – Komplement-abgereicherte Kontrolle | Humanes Serum AB HI — gleiche Konzentration | 56 °C/30 min zerstört das Komplement. Für einen aussagekräftigen Vergleich sind gepaarte native/HI-Proben aus demselben Spenderpool erforderlich. |
Drei Mechanismen der Seruminterferenz erklärt
| Mechanismus | Betroffene Assays | Serumkomponente | Lösung |
|---|---|---|---|
| Fc-Rezeptor-Kompetition Rinder-IgG bindet an FcγRI/II/III auf Effektorzellen, bevor der monoklonale Antikörper zugegeben wird |
ADCC, ADCP, 3D-Sphäroid-Antikörper-Assays | IgG (200–800 µg/ml im Standard FBS) | FBS Extrem niedriger IgG-Wert <5 µg/ml |
| Komplementaktivierung Das aktive Komplementsystem lysiert komplementempfindliche Zellen spontan – unabhängig von Antikörpern |
CDC, ELISpot mit PBMC, beliebige Assays mit Lymphoblasten oder Erythrozyten als Zielzellen | Komplementproteine C1q–C9 (in Nicht-HI-Serum) | Durch Erhitzen inaktiviertes Serum (56 °C/30 Min.) oder Humanes Serum AB HI |
| Farbstoff- und Verbundbindung Serumproteine binden fluoreszierende Farbstoffe und Testverbindungen – dies führt zu einer Verringerung des scheinbaren Signals |
AlamarBlue, Calcein AM, MTT, beliebiger fluoreszierender Lebensfähigkeits-Assay | Albumin, IgG, Lipidbindende Proteine | In allen Vertiefungen identisches %-Serum. Subtraktion der Blindprobe (nur Serum). FBS, endotoxinarme |
Validierte Protokolle
Protokoll 1 – ADCC-Assay mit FBS Ultra Low IgG
1. Kultivieren Sie NK-Zellen oder PBMC 5–7 Tage lang in 5–10% FBS Ultra Low IgG <5 µg/mL in RPMI-1640.
2. Bereiten Sie die Zielzellen in 5% FBS Ultra Low IgG vor – waschen Sie sie vor dem Assay zweimal, um Reste von Rinder-IgG zu entfernen.
3. Die Zielzellen 30 Minuten lang bei 37 °C mit therapeutischem mAb in einer Konzentration von 1–10 µg/mL opsonisieren.
4. Kokultur von Effektor- und Zielzellen im E:T-Verhältnis von 10:1–50:1 in 5% FBS Ultra Low IgG für 4–6 Stunden bei 37 °C.
5. LDH-Freisetzung, Calcein-AM oder PI-Durchfluss messen – die Serumkonzentration ist bei den Kontrollen mit spontaner und maximaler Lyse identisch.
% Spezifische Lyse = [(Testwert − Spontanwert) / (Maximalwert − Spontanwert)] × 100
Protokoll 2 – CDC-Test mit humanem Serum AB (nativ + HI-Paar)
1. Zielzellen (z. B. Daudi CD20+) in serumfreiem Medium vorbereiten – zweimal waschen.
2. Therapeutischen mAb in einer Konzentration von 1–10 µg/ml hinzufügen – 30 Minuten auf Eis inkubieren.
3. Fügen Sie „Human Serum AB OTC native“ in einer Konzentration von 10–25% als Komplementquelle hinzu. Verwenden Sie „Human Serum AB HI“ in identischer Konzentration als komplementfreie Kontrolle.
4. Bei 37 °C 60 Minuten inkubieren.
5. Bestimmung des PI-Ausschlusses mittels Durchflusszytometrie oder anhand der LDH-Freisetzung.
Komplement-spezifische Lyse = CDC (nativ) − CDC (HI)
Protokoll 3 – AlamarBlue mit konsistenter Serumkontrolle
1. 2.000–10.000 Zellen/Well in eine 96-Well-Platte in 5–10% FBS mit niedrigem Endotoxingehalt ≤5 EU/ml ausplattieren.
2. Die Testverbindung in serieller Verdünnung in ein Medium mit identischer Serumkonzentration geben.
3. Enthält: Vehikelkontrolle, Kontrolle mit maximaler Abtötungsrate (0,11 TP22T Triton X-100), Blindprobe nur mit Serum (ohne Zellen) – ALLE mit identischem Serum %.
4. AlamarBlue-Reagenz im Verhältnis 1:10 hinzufügen – 2–4 Stunden bei 37 °C inkubieren.
5. Fluoreszenz messen (Ex 560 / Em 590 nm). Ziehen Sie vor der Berechnung der %-Lebensfähigkeit aus allen Vertiefungen die Blindprobe (nur Serum) ab.
Häufig gestellte Fragen
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