Live-Zellbildgebung an Organoiden – Kontinuierliche Hellfeld-Überwachung ohne Entnahme der Probe
zenCELL owl integriert bis zu 24 gleichzeitige Hellfeld-Bildgebungskanäle direkt in den Inkubator – so lassen sich Wachstum, Morphologie und Wirkstoffreaktion der Organoide kontinuierlich von der Aussaat bis zum Endpunkt überwachen, ohne dass die Proben jemals entnommen werden müssen. Keine Phototoxizität. Kein Thermoschock. Keine Störung des CO₂-Gleichgewichts. Das einzige im Inkubator einsetzbare Bildgebungssystem mit exklusivem OrganoMedium™-Paket in der DACH-Region.
24 Kulturen gleichzeitig überwachen
24 unabhängige Hellfeld-Bildgebungskanäle in einem Gerät. Führen Sie Dosis-Wirkungs-Vergleiche, Behandlungsgruppen und Kontrollen parallel durch – ganz ohne mehrere Geräte.
Entnehmen Sie niemals Proben
zenCELL owl arbeitet unter vollständigen Inkubatorbedingungen – 37 °C, 5% CO₂, Luftfeuchtigkeit. Die Organoide werden zu keinem Zeitpunkt gestört. Kein Thermoschock, keine CO₂-Schwankungen, kein phototoxischer Stress.
Keine Marker, kein Photobleich
Die kontrastreiche, phasenähnliche Hellfeld-Bildgebung erfasst die Morphologie, Größe, Struktur und Reaktion von Organoiden ohne den Einsatz von Fluoreszenzfarbstoffen. Kostengünstig und mit allen lebenden Zellen kompatibel.
Kompatibel mit 96- und 384-Well-Platten
Kompatibel mit den Automatisierungsplattformen von Hamilton, Tecan und Beckman. Echtes Organoid-Screening mit hohem Durchsatz ohne konfokale Infrastruktur oder manuelle Endpunkt-Assays.
Was zenCELL owl aufdeckt, was Endpunkt-Assays übersehen
Wenn Organoid-Forscher ausschließlich Endpunkt-Assays verwenden – Lebensfähigkeit, ATP, LDH –, sehen sie zwar das Ergebnis, verpassen aber den Prozess. zenCELL owl erfasst die gesamte zeitliche Dynamik:
Zeitlicher Verlauf der Arzneimittelwirkung: Wann hat das Organoid begonnen zu reagieren? Ist die Reaktion reversibel, wenn das Medikament ausgewaschen wird? Gibt es eine dosisabhängige Verzögerung beim Einsetzen der Wirkung? Diese Fragen lassen sich mit zeitaufgelöster Hellfeld-Bildgebung beantworten – was allein mit Endpunktdaten unmöglich ist.
Morphologische Übergänge: Führt das Medikament zum Zusammenbruch, zur Schwellung, zur Fragmentierung oder zum Verlust der inneren Struktur der Organoide? Endpunkt-Lebensfähigkeitsassays weisen zwar den Zelltod nach, geben jedoch keinen Aufschluss über die Art oder den Zeitpunkt des Zelltods. Zeitrafferaufnahmen im Hellfeld zeigen den gesamten Ablauf.
Frühzeitig erkannte fehlgeschlagene Kulturen: Bei Protokollen zur Züchtung von aus iPS-Zellen gewonnenen Organoiden, die sich über mehrere Wochen erstrecken, erkennt zenCELL owl fehlgeschlagene Differenzierungsvorgänge bereits am 5. bis 7. Tag – und nicht erst am Ende des Prozesses, wenn bereits vier Wochen Kulturdauer verloren gegangen sind. So werden frühzeitige Eingriffe oder eine erneute Aussaat möglich.
Kontraktilität von Herzorganoiden: In gut entwickelten Kardiomyozytenaggregaten ist im Hellfeld-Zeitraffer eine rhythmische Kontraktion zu erkennen – ein nicht-invasiver Indikator für die Funktionsqualität ohne die Phototoxizität von Kalziumfarbstoffen.
Erstellung von Wachstumskurven: Die automatisierte Größenmessung über alle 24 Kanäle hinweg erstellt Wachstumskurven vom ersten Tag bis zum Endpunkt – dabei werden Ausreißer-Vertiefungen, Chargeneffekte und Probleme mit der Aussaatdichte automatisch erkannt.
zenCELL owl für Organoide – wichtigste technische Daten
- 24 unabhängige Bildgebungskanäle, gleichzeitig
- Betrieb im Inkubator — 37 °C, 5% CO₂, Luftfeuchtigkeit
- Hellfeld — keine Fluoreszenz erforderlich
- Kompatibel mit 96-Well- und 384-Well-Platten
- Automatisierungsfähig (Hamilton, Tecan, Beckman)
- Zeitraffer von Minuten bis zu Wochen
- Automatisierte Größen- und Morphologieanalyse
- Kratztest / Migrationsanalyse
- Kein Risiko einer Phototoxizität
- Keine Probenentnahme – keine thermische oder CO₂-bedingte Störung
- Als Paket erhältlich mit OrganoMedium™
- Vertrieb in der DACH-Region über SeamlessBio und innoME
Anwendungen von zenCELL owl nach Organoidtyp
| Organoid-Typ | zenCELL-Eule-Anwendung | Was wird erfasst? | Warum Hellfeld ausreicht |
|---|---|---|---|
| Tumorsphäroide | Kinetik der Zytotoxizität von Arzneimitteln, IC₅₀-Zeitverlauf, Wachstumshemmung | Größenentwicklung im Zeitverlauf, morphologische Veränderungen, Kantenschärfe, innere Dichte | Der Kollaps, die Fragmentierung und der Wachstumsstillstand der Sphäroide sind im Hellfeld deutlich zu erkennen |
| Darmorganoide | Überwachung der Krypto-Villus-Struktur, arzneimittelbedingte Schädigung, Entzündungsreaktion | Knospenmorphologie, Kryptenbildung, strukturelle Integrität | Die Kryptenstruktur und die Knospenbildung sind kontrastreiche Hellfeldmerkmale |
| Leberorganoide / Hepatosphären | DILI (medikamenteninduzierte Leberschädigung) – zeitlicher Verlauf, Hepatotoxizität | Verdichtung der Sphäroide, innere Struktur, Größenänderung, Fragmentierung | Die Struktur der Hepatozytenaggregate lässt sich deutlich von nekrotischem Gewebe unterscheiden |
| Gehirn / zerebrale Organoide | Wachstum über mehrere Wochen, Bildung der Ventrikelzone, Überwachung der Differenzierung | Gesamtgröße, Oberflächenmorphologie, interne dunkle/helle Bereiche | Die Wachstumszonen von zerebralen Organoiden lassen sich anhand der optischen Dichte im Hellfeld unterscheiden |
| Herzorganoide / -aggregate | Überwachung der Kontraktilität (Hellfeld-Zeitraffer), kardiotoxische Wirkung von Arzneimitteln | In Zeitrafferaufnahmen sichtbare rhythmische Kontraktion – Qualitätsindikator | Die Kontraktion der Kardiomyozyten führt im Hellfeld zu einer messbaren Pixelverschiebung |
| Aus Patienten gewonnene Organoide (PDOs) | Screening auf Arzneimittelsensitivität, personalisierte Onkologie | Wachstumskinetik je Behandlungsbedingung, morphologische Reaktion | Unterschiede in der Wachstumsrate zwischen den verschiedenen Medikamentenbedingungen werden automatisch quantifiziert |
| Aus iPS-Zellen gewonnene Organoide | Überwachung der Differenzierungsqualität in den Wochen 1–8 | Strukturelle Entwicklung, fehlgeschlagene Kulturidentifizierung am 5.–7. Tag | Fehlgeschlagene Differenzierungen führen zu einem charakteristischen, unstrukturierten Hellfeldbild |
zenCELL owl im Vergleich zu herkömmlichen Verfahren zur Organoid-Bildgebung
| Vorgehensweise | zenCELL Eule | Manuelle Endpunkt-Abbildung | Konfokalmikroskop für den Labortisch | Plattenlesegerät (ATP/LDH) |
|---|---|---|---|---|
| Betrieb im Inkubator | ✓ Immer | ✗ Probenentnahme | ✗ Probenentnahme | ✗ Probenentnahme |
| Kontinuierliche Zeitrafferaufnahme | ✓ Tag 1 bis zum Endpunkt | ✗ Nur Momentaufnahmen | ⚠ Manuell, nicht kontinuierlich | ✗ Keine Bildgebung |
| Keine Probenzerstörung | ✓ | ✗ Thermoschock, CO₂ | ✗ Thermoschock, CO₂ | ✗ |
| Es sind keine Fluoreszenzmarker erforderlich | ✓ Hellfeld | ⚠ Oft erforderlich | ✗ Fluoreszenz erforderlich | ✗ Nur biochemisch |
| Risiko einer Phototoxizität | ✓ Keine (Hellfeld) | ✗ Ja (Fluoreszenz) | ✗ Hoch (konfokal) | ✓ Keine |
| 24 Wells gleichzeitig | ✓ | ✗ Einer nach dem anderen | ✗ Sequenziell | ✓ |
| Kompatibel mit HTS-96/384-Well-Platten | ✓ | ✗ | ⚠ Zeitaufwendig | ✓ |
| Morphologische Informationen | ✓ Vollständige strukturelle | ✓ | ✓ Beste Auflösung | ✗ Keine |
| OrganoMedium™-Paket | ✓ Exklusiv in der DACH-Region | ✗ | ✗ | ✗ |
Häufig gestellte Fragen
zenCELL Owl Demo + OrganoMedium™-Paket
Fordern Sie eine zenCELL owl-Demo mit Ihren eigenen Organoid-Proben an. Exklusives DACH-Starterpaket: zenCELL owl + 3 Monate OrganoMedium™-Vorrat. Kostenlose OrganoMedium™-Proben für die Protokollvorbereitung.
E-Mail: info@seamlessbio.de | +49 851 37932226 | zencellowl.com
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