Zellbiologie und Bildgebung – Anwendungsleitfäden
Vier Fachleitfäden zu den gängigsten Arbeitsabläufen in der Zellbiologie – von Grundversuchen und Zytotoxizitätstests bis hin zur 3D-Sphäroidkultur und der automatisierten Lebendzellüberwachung. Jeder Leitfaden enthält Informationen zur Serumauswahl, zu den einzelnen Protokollschritten sowie Produktempfehlungen.
Zellbiologische Assays bilden die Grundlage der präklinischen Wirkstoffforschung, der Krebsforschung und der Sicherheitsprüfungen. Die Qualität und Konsistenz Ihres FBS, der Endotoxingehalt sowie der verwendete Bildgebungsansatz bestimmen direkt die Reproduzierbarkeit und biologische Relevanz Ihrer Daten. Diese Leitfäden behandeln die häufigsten Fragen, mit denen Forscher konfrontiert sind: Welche FBS-Qualitätsstufe sollte verwendet werden, wann sollte auf Serum verzichtet werden und wie lässt sich die Überwachung kinetischer Daten automatisieren?.
Migrations-Scratch-Assay – Leitfaden zu Protokoll und Optimierung
Schritt-für-Schritt-Protokoll für einen Wundheilungsassay: Serumstrategie, Anforderungen an die Zellkonfluenz, häufige Fallstricke und automatisierte Quantifizierung des Wundverschlusses mittels Live-Zell-Imaging.
Anleitung lesen →Zytotoxizitätstests – FBS und Leitfaden zur Serumauswahl
MTT, CellTiter-Glo, LDH und Live/Dead-Imaging: Welcher FBS-Typ minimiert Seruminterferenzen und Endotoxin-Effekte auf den IC50-Wert, und wann sollten serumfreie Bedingungen verwendet werden?.
Anleitung lesen →Sphäroide und 3D-Zellkultur – Protokoll und Anleitung für FBS
ULA-Plattenverfahren, Hängetropfen-Assay, Konzentrationsoptimierung nach dem FBS-Prinzip, Wirkstoffscreening in 3D-Tumorsphäroiden sowie bildgebende Verfahren zur Größenbestimmung.
Anleitung lesen →Live-Zellüberwachung – Anleitung zum zenCELL Owl-Inkubator-Mikroskop
So automatisieren Sie die Konfluenzüberwachung, Zeitrafferaufnahmen von Scratch-Assays und die Überwachung der Zytotoxizität in Ihrem CO₂-Inkubator – markierungsfrei und für 24 Wells gleichzeitig.
Anleitung lesen →Empfohlene Produkte für zellbiologische Assays
Welche FBS-Qualität für welchen Assay?
Eine häufige Ursache für Abweichungen bei zellbiologischen Assays ist die uneinheitliche Auswahl der FBS-Qualitätsstufe. Die folgende Tabelle fasst die richtige Wahl für jeden in dieser Kategorie behandelten Arbeitsablauf zusammen:
| Assay | FBS-Güteklasse | Phase |
|---|---|---|
| Scratch-Assay – Zellvermehrung | Standard | 10% |
| Kratztest – Migrationsphase | Standard | 1–2% |
| Zytotoxizität – Standard-Screening | Standard | 10% |
| Zytotoxizität – NF-κB-/Zytokin-Medikamente | Geringer Endotoxingehalt <1 EU/ml | 5–10% |
| Sphäroidbildung | Standard | 2–10% |
| Überwachung lebender Zellen | Standard oder endotoxinarme | Pro Test |
FBS-Proben-Set für zellbiologische Assays
Fordern Sie Testmengen von „FBS Standard“ und „FBS Low Endotoxin“ an, um diese an Ihrer spezifischen Zelllinie und Assay-Plattform zu validieren, bevor Sie sich für eine Produktionscharge entscheiden.
E-Mail: info@seamlessbio.de | +49 851 37932226 | seamlessbio.de/kontakt
