Exosomen · Extrazelluläre Vesikel

FKS enthält 1010–1012 EVs pro ml. Jede EV-Präparation aus serumhaltiger Kultur wird zusammen mit bovinen Vesikeln isoliert. Wenn Ihre Anwendung MSC-spezifische EVs erfordert, ist die Wahl des Mediums keine Option, sondern Pflicht.

MSC-Exosomen und extrazelluläre Vesikel werden intensiv als therapeutische Transportvehikel und Biomarker entwickelt. Das Grundproblem der meisten EV-Produktionsprozesse ist die Serumverunreinigung: Bovine EVs aus FKS sedimentieren bei jeder üblichen Ultrazentrifugationsgeschwindigkeit zusammen mit den MSC-EVs und lassen sich nicht ohne Ausbeuteverlust entfernen.

CelliMax MSC1 ist ein serumfreies, chemisch definiertes MSC-Expansionsmedium. Damit lassen sich MSCs auf ausreichende Dichte expandieren, bevor auf ein EV-Konditionierungsmedium gewechselt wird – oder die gesamte Expansion läuft von Anfang an serumfrei.

So passt CelliMax MSC1 in einen EV-Produktionsprozess

  • Expansionsphase: MSCs in CelliMax MSC1 bis zur Zielzellzahl expandieren – hohe Proliferationsrate ohne Serum
  • Serumfreier Wechsel: direkter Übergang in EV-freies Konditionierungsmedium ohne Serumentzug – geringere Stressantwort als bei serumadaptierten Zellen
  • Scale-up: MSC1 unterstützt das Wachstum in Mehrlagenflaschen und lässt sich für größere EV-Mengen auf Hohlfaser-Bioreaktoren übertragen
  • Aufreinigung: kein boviner EV-Hintergrund – Ihre NTA- und Kryo-EM-Daten zeigen Ihre MSCs, nicht das Medium

Dokumentation für die therapeutische EV-Entwicklung

Für Gruppen, die MSC-EVs als Therapeutikum mit IND-Ziel oder als moderne Diagnostik entwickeln, ist für CelliMax MSC1 eine vollständige Materialdokumentation verfügbar: Offenlegung der Zusammensetzung, TSE/BSE-Erklärung, Endotoxingrenzwerte, Sterilitätsdaten. GMP-Qualität als Pulver und Flüssigmedium.

Warum bovine EVs so schwer zu entfernen sind

Bovine Serum-EVs überschneiden sich mit MSC-abgeleiteten kleinen EVs in Größe (etwa 30–150 nm), Dichte und gängigen Tetraspanin-Markern. Differenzielle Ultrazentrifugation, Größenausschlusschromatographie und Tangentialflussfiltration isolieren sie alle mit. „EV-depletiertes“ FKS verringert den Hintergrund, beseitigt ihn aber nicht, und die Depletion entfernt auch Wachstumsfaktoren, sodass Zellen oft langsamer wachsen. Am saubersten ist es, Serum ganz aus dem Prozess herauszuhalten.

Praxishinweise zur MSC-EV-Produktion

  • Erntezeitpunkt: bei 70–80 % Konfluenz konditionieren; überwachsene Kulturen setzen mehr apoptotische Körperchen und stressbedingte Vesikel frei.
  • Vor dem Konditionieren waschen: den Zellrasen 2–3-mal mit PBS spülen, um Reste von Mediumproteinen vor Zugabe des Konditionierungsmediums zu entfernen.
  • Konditionierungszeit: 24–72 h sind üblich; die Viabilität bei der Ernte prüfen (idealerweise über 90 %), damit die EV-Präparation nicht von absterbenden Zellen dominiert wird.
  • Vorklärung: aufeinanderfolgende Zentrifugationen mit niedriger Drehzahl (z. B. 300 × g, 2.000 × g, 10.000 × g) vor Ultrazentrifugation, SEC oder TFF.
  • Charakterisierung: Partikelgröße und -konzentration (NTA), Morphologie (TEM/Kryo-EM), Positivmarker (z. B. CD63, CD81, TSG101) und einen Negativmarker wie Calnexin angeben, entsprechend den MISEV-Empfehlungen.
  • Konsistenz: das Expansionsmedium über alle Chargen konstant halten – ein definiertes Medium macht EV-Ausbeute und Cargo von Lauf zu Lauf vergleichbar.

Häufig gestellte Fragen

Kann ich MSC in FKS expandieren und erst für die EV-Konditionierung auf serumfreies Medium wechseln?

Das ist möglich, aber an Serum adaptierte Zellen reagieren auf den Wechsel oft mit einer Stressphase, die EV-Freisetzung und Cargo verändert, und Serumproteine können verschleppt werden. Eine serumfreie Expansion von Anfang an vermeidet beide Effekte.

Ist EV-depletiertes FKS eine ausreichende Alternative?

Es senkt den bovinen EV-Hintergrund, entfernt ihn aber nicht vollständig, und der Depletionsschritt verändert auch den Wachstumsfaktorgehalt. Für therapeutische oder Biomarker-Arbeiten ist ein definiertes serumfreies Medium die robustere Wahl.

Welche MSC-Quellen funktionieren mit dem CelliMax® MSC-Medium?

MSC aus Knochenmark, Fettgewebe und Nabelschnur. Das Medium unterstützt die Expansion vom Forschungsmaßstab bis zur Herstellung in GMP-Qualität.

Welche Dokumentation gibt es für die Entwicklung von EV-Therapeutika?

Offenlegung der Zusammensetzung, TSE/BSE-Erklärung, Endotoxin-Grenzwerte, Sterilitätsdaten und ein CoA pro Charge. GMP-Qualität ist als Pulver und Flüssigmedium im Produktionsmaßstab verfügbar, Chargengrößen auf Anfrage.

Produktseite: CelliMax® serumfreies MSC-Medium – Spezifikationen, Formate und Dokumentation.

CelliMax MSC1 für die EV-Produktion

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